粉砂糖シェーカーとアルコールウォッシュフィルターは、機械的分離装置として機能します。これにより、バロアダニを成蜂から分離し、寄生レベルを正確に定量化します。特定の媒体（研磨性の砂糖または液体溶液）を使用して、寄生虫と宿主の間の物理的な結合を断ち切ることで、これらのツールは特殊なろ過スクリーンを使用して、分離されたダニをミツバチから分離し、100匹あたりのミツバチあたりの寄生率を正確に計算できるようにします。
主な要点：これらのツールは、ダニの付着を物理的に断ち切り、メッシュスクリーンを通してろ過することで、主観的な観察を客観的なデータに変換します。このプロセスは、標準化された「ダニ負荷」メトリックを提供します。これは、コロニーの崩壊を防ぐために治療閾値が超えられた時期を判断するための唯一の信頼できる根拠です。
物理的分離の仕組み
ろ過スクリーンの役割
砂糖シェーカーとアルコールウォッシュの両方の中心的なコンポーネントは、特殊なろ過スクリーンです。
このメッシュは、分離されたバロアダニが通過したり、別のチャンバーに捕捉されたりするのを許容する特定のサイズに校正されており、成蜂のより大きな体は保持されます。
この物理的分離は、オペレーターがミツバチの塊による視覚的な妨害なしに、ダニを個別に数えることができるため、非常に重要です。
標準化されたサンプリング
データが統計的に関連性があることを保証するために、これらのツールは約500匹の成蜂のサンプルを処理するように設計されています。
一貫したサンプル量を使用することで、結果のダニ数を高い信頼度でコロニーの残りの部分に外挿できます。
媒体が検出をどのように促進するか
アルコールウォッシュ法
アルコールウォッシュフィルターを使用する場合、70％エタノールの溶液が洗浄液として使用されます。
この溶液は、バロアダニとミツバチの体表面、特に硬化板と節の間の付着を大幅に低減する化学的湿潤剤として機能します。
この表面張力を断ち切ることで、ダニはより簡単に分離され、正確な計数のための高い回収率が保証されます。
サンプルの保存
分離を超えて、アルコールは生物学的保存剤として機能します。
これにより、スクリーニングプロセス中にミツバチとダニの両方の劣化を防ぎ、サンプルを生物学的分解なしに後で保存および分析できるようになります。
粉砂糖法
砂糖シェーカーでは、粉砂糖は液体剤ではなく、乾燥した研磨性の媒体として機能します。
砂糖の適用は、ミツバチからダニを dislodge し、宿主の体から落ちるようにします。
分離されると、シェーキング動作により、ダニは計数のためにフィルターを通過します。これはアルコール法と同様ですが、サンプルを濡らすことはありません。
カウントをコロニーの健康データに変換する
ダニ負荷の計算
これらのツールの主な出力は、約500匹のミツバチのサンプルで見つかったダニの生カウントです。
技術者は、このカウントをミツバチの数で割って、「100匹あたりのダニ」比率を決定します。これは、寄生強度を測定するための業界標準です。
治療閾値の決定
この定量的データは、養蜂を推測から科学的管理へと移行させます。
正確な寄生率（例：42％などの特定の率に達する）を知ることで、養蜂家は変形翼ウイルス（DWV）の伝染とコロニーの大規模な死のリスクを評価できます。
トレードオフの理解
サンプルの死亡率対保存
検出を促進する上での最も重要な違いは、ミツバチサンプルの結果にあります。
アルコールウォッシュ法は、サンプリングされた500匹のミツバチにとって致命的ですが、さらなる科学的研究のために検体を保存できるという利点があり、化学的浸透により非常に高いダニ回収率が得られることがよくあります。
粉砂糖は一般的に非致死的であり、ミツバチを巣箱に戻すことができますが、エタノールの保存特性がなく、物理的な分離のみに依存しています。
侵襲的監視対受動的監視
シェーカーとフィルターの両方で、巣箱を開けて生きたミツバチを手動で抽出する必要があり、一時的なコロニーの混乱を引き起こします。
これは、底板に自然に落ちたダニを収集するスティッキーボードのような受動的なツールとは異なります。ただし、シェーカー/フィルターを使用したアクティブサンプリングは、通常、成蜂の現在の寄生密度をより即時的かつ正確に把握できます。
あなたの目標に合った選択をする
主な焦点が最大の精度と保存である場合：
- 70％エタノールを使用したアルコールウォッシュ法を利用してください。化学的にダニの付着を低減し、最も信頼性の高いカウントを行い、サンプルを後で検証できるように保存します。
主な焦点が即時の非致死的な評価である場合：
- 粉砂糖シェーカーを利用してください。これは、乾燥した分離によってダニの検出を促進し、サンプルのミツバチをコロニーに生きたまま戻すことができます。
主な焦点が厳密な受動的監視である場合：
- 巣箱の底にスティッキーボードを使用して、時間の経過とともに自然なダニの落下を追跡しますが、アクティブフィルターが提供する即時の「100匹あたりのダニ」密度メトリックを提供しないことに注意してください。
正確な測定は防御の第一線です。正確に測定できないものを効果的に治療することはできません。
概要表：
| 特徴 | アルコールウォッシュフィルター | 粉砂糖シェーカー |
|---|---|---|
| メカニズム | 化学的分離（70％エタノール） | 物理的/研磨性分離 |
| 精度 | 高（最高の回収率） | 中程度から高 |
| ミツバチの生存 | サンプルに対して致命的 | 非致死的（ミツバチは巣箱に戻る） |
| 保存 | 後での研究に最適 | なし |
| 最適な用途 | 精密科学的監視 | 即時の現場評価 |
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参考文献
- Abdullah Ibrahim, Marla Spivak. Field trial of honey bee colonies bred for mechanisms of resistance against<i>Varroa destructor</i>. DOI: 10.1051/apido:2006065
この記事は、以下の技術情報にも基づいています HonestBee ナレッジベース .
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