知識 ミツバチのサンプリングに密閉プラスチックカップと低温フリーザーが必要なのはなぜですか?専門家による保存ガイド
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技術チーム · HonestBee

更新しました 2 days ago

ミツバチのサンプリングに密閉プラスチックカップと低温フリーザーが必要なのはなぜですか?専門家による保存ガイド


密閉プラスチックカップと低温フリーザーは、生物学的活動の「一時停止ボタン」として機能し、サンプルの状態を採取した瞬間のまま正確に保存する不可欠なツールです。

この組み合わせは、ミツバチと寄生ダニの両方の生理活動を効果的に停止させます。分解を防ぎ、標本を固定することにより、このプロセスによりダニが分離したり消滅したりしないことが保証され、その後の定量的分析と形態学的識別の精度が保証されます。

コアの要点 ミツバチのデータ(ダニのカウントでも遺伝子分析でも)の完全性は、採取後の生物学的変化を防ぐことに完全に依存します。密閉カップは物理的な分離を提供して交差汚染を防ぎ、フリーザー(通常-20℃)はサンプルを化学的に固定して分解と寄生虫の損失を停止させます。

物理的および生物学的完全性の保存

このサンプリングプロトコルの主な目標は、実験室で分析される標本が、フィールドで採取された標本と同一であることを保証することです。

宿主と寄生虫の固定

低温(約-20℃)の即時適用は、ミツバチとその寄生虫の生理活動を停止させるために重要です。

サンプルが活動状態または温かいままであると、寄生ダニがミツバチの宿主から分離する可能性があります。冷凍はダニを所定の位置に固定し、実験室でのカウントがコロニーの真の感染レベルを反映することを保証します。

分解の防止

ミツバチは死後急速に分解するため、形態学的識別が損なわれます。

低温保存は組織の生物学的分解を抑制します。この保存は、正確な目視検査とカウントのためにミツバチの物理的構造を維持するために必要です。

交差汚染の防止

密閉された標準化されたプラスチックカップを使用することで、サンプルが外部環境から隔離されます。

この物理的なバリアは、ノゼマ種や慢性ミツバチ麻痺ウイルス(CBPV)などの病原体負荷の正確な検出に不可欠です。これにより、実験室で検出された病原体が、隣接するサンプルや取り扱いツールからではなく、その特定のコロニーに由来することが保証されます。

化学的および分子的精度の確保

目に見える寄生虫を超えて、研究者はしばしばミツバチの化学的および遺伝的構成を分析します。保存方法は、この微細なデータの妥当性に大きく影響します。

微生物叢の真正性

工業用グレードの滅菌プラスチック容器は、環境微生物の混入を防ぎます。

ミツバチの微生物叢を分析する場合、検出された細菌がミツバチの内部システムまたは体表面から来ることが重要です。密閉された滅菌容器は、結果が不純物や非滅菌サンプリングツールによって歪められないことを保証します。

酵素と脂質の安定性

-8℃から-40℃の保管環境を維持することは、表面酵素の分解を抑制します。

この温度範囲は、揮発性脂質成分の損失も最小限に抑えます。これらの化学マーカーを保存することで、実験データが捕獲時のミツバチの実際の生理学的状態を正確に表していることが保証されます。

トレードオフの理解

標準的な「密閉カップとフリーザー」法は堅牢ですが、分析目標によってこのプロトコルに特定の調整が必要になります。

標準冷凍(-20℃)の限界

-20℃はダニのカウントや一般的な形態学には十分ですが、すべての分子作業には十分ではない場合があります。

ウイルスや病原体が関与する長期保存の場合、超低温フリーザー(-80℃)が必要になることがよくあります。この極低温は分子構造をより効果的に固定し、数年間のスクリーニングにおける核酸の分解を防ぎます。

「生きたサンプル」の例外

冷凍はミツバチの生命を破壊しますが、ほとんどの構造的および化学的分析では許容されます。

ただし、主な目的が高品質で非分解性のRNAを取得してウイルス力価を監視することである場合、採取直後の冷凍が常に最善のアプローチとは限りません。これらの特定のケースでは、換気された容器に砂糖飼料を入れて、抽出直前まで宿主を生かしておくことでRNAの分解を防ぐために、ミツバチを実験室まで生きたまま輸送するために使用されます。

目標に合った適切な選択

サンプルから抽出したい特定のデータに基づいて、保管および採取プロトコルを選択してください。

  • 主な焦点が寄生虫定量(ダニ)の場合:密閉カップと-20℃フリーザーを使用してダニを固定し、宿主からの分離と損失を防ぎます。
  • 主な焦点が微生物叢分析の場合:環境細菌からの交差汚染を厳密に防ぐために、滅菌された工業用グレードの密閉容器を優先します。
  • 主な焦点が長期ウイルススクリーニングの場合:核酸と分子構造の最大安定性を確保するために、超低温フリーザー(-80℃)を利用します。
  • 主な焦点が高品質RNA抽出の場合:実験室作業前のRNA分解を防ぐために、餌のある換気された容器で生きたミツバチを輸送することを検討してください。

信頼できるデータは、物理的に分離され、熱的に安定化されたサンプルから始まります。これにより、生物学的変化が厳密に制限されます。

概要表:

保存要因 保管ツール 主な利点
寄生虫負荷 密閉カップ + -20℃フリーザー ダニを固定します。宿主からの分離と損失を防ぎます。
形態学 -20℃低温フリーザー 分解を停止させます。IDのために物理的構造を維持します。
微生物叢の完全性 滅菌密閉容器 環境細菌からの交差汚染を防ぎます。
化学的安定性 -8℃から-40℃保管 酵素分解と揮発性脂質損失を抑制します。
分子研究 -80℃超低温フリーザー 長期研究のための核酸とRNAの分解を防ぎます。

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参考文献

  1. Ivana Tlak Gajger, Maja Ivana Smodiš Škerl. Effectiveness of the innovative remedy ApiBonum ib on honeybee colony vitality. DOI: 10.46419/cvj.57.1.7

この記事は、以下の技術情報にも基づいています HonestBee ナレッジベース .

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